(完整版)大肠杆菌感受态细胞的制备
发布时间:2020-05-12 来源:文档文库
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大肠杆菌感受态细胞的制备
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tr..,Ca..,co.. 分类: 细胞技术 > 感受态细胞 来源:
实验管理实验概要
大肠杆菌感受态细胞的CaCl2法制备及质粒转化 实验原理
处于对数生长期的细菌经CaCl2 处理后接受外源DNA的能力显著增加。细菌处于容易吸收外源DNA的状态叫感受态。
在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态,以摄取外源DNA。
转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(R-,M-),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Compenent cells)。进入受体细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。将经过转化后的细胞在筛选培养基中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源DNA 分子的受体细胞)。目前常用的感受态细胞制备方法有CaCl2和RbCl(KCl法,RbCl(KCl法制备的感受态细胞转化效率较高,但CaCl2法简便易行,且其转化效率完全可以满足一般实验的要求,制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法使用更广泛。 主要试剂
(10.1mol/L CaCl2溶液 (2LB液体培养基
(330%甘油:30mL甘油溶于100mL蒸馏水,高压灭菌。 主要设备 (1超净工作台 (2冷冻离心机 (3恒温摇床 (4-70℃冰箱 (510mL移液管 (6吸耳球
(71mL、200μL移液枪(配套枪头) (850mL 离心管 (91.5mL离心管 实验材料
(1大肠杆菌DH5α(R-,M-,Amp-) 实验步骤
(一)受体菌的培养
(1从LB平板上挑取新活化的E. coli DH5α单菌落,接种于3~5mL LB液体培养基中,37℃下振荡培养过夜(12h左右)。
(2将该菌种悬液以1:100的比例接种,取250μL菌液转接到25mL LB液体培养基中,37℃振荡培养2~3h至OD600=0.5左右。
(二)感受态细胞的制备(注意:以下操作在超净工作台完成。) (1将菌液转入50mL离心管中,冰上放置10min。
(2在4℃下,4000r/min离心10min。弃去上清,将管倒置1min以便培养液流尽。 (3用冰上预冷的0.1mol/L的CaCl2 溶液10mL轻轻悬浮细胞,冰上放置30min。 (40~4℃ 4000r/min离心10min,弃去上清,加入2mL预冷的0.1mol/L的CaCl2 溶液,轻轻悬浮细胞,冰上放置(务必冰上放置)。(注意:以上操作完成了新鲜感受态细胞的制备)
(三)感受态细胞的分装与冻存
(1在2mL制备好的感受态细胞中加入2mL30%甘油(即1:1体积,甘油终浓度15%)。 (2将此感受态细胞分装成每份200μL (1.5mL dorf管,液氮速冻,快速转入