细菌16S扩增详细步骤和注意要点

发布时间:2011-09-09 21:41:27   来源:文档文库   
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16S全长通用引物:

8F/1492R使用最普遍,效果的确不错;但我们的经验是sgF/sgR(上海生工公司扩16S推荐的引物)效果更好。这2对引物对应的PCR产物都在1.5kb左右。

16S V6区通用引物:

这对引物也是我们用过的,效果很好。对应的PCR产物约90bpV6区平均长度80-100bp,一说79bp)。

引物到后,先在迷你离心机上短暂离心,将黏附在管口、管壁、管盖的核苷酸粉末甩到管底,然后在超净台操作(因为16S序列所有细菌里都有,扩增时很容易混入杂菌,因此本实验涉及的每一种试剂、耗材都要非常小心,保证无污染):按照引物合成单的说明,加入灭菌的TE缓冲液,如果没有,灭菌的双蒸水也行(注意每OD加入量不等于最终加入量,一般引物合成是2OD)。溶解核苷酸粉末后,用枪头吹吸混匀。取5μL溶液转移到另一个灭菌的EP管,加入45μL灭菌的双蒸水,即稀释10倍,此时引物浓度为10μM,也就是工作浓度。最好分装保存,避免多次使用导致反复冻融,造成引物不稳定。

genomic DNA为模板,最适模板量为0.1-10 ng,多了可能引发非特异性扩增,少了可能扩不出来,所以要先稀释。PCR体系建议25μL,效果远好于50μL。推荐用TAKARALA Taq(保真度是普通Taq6.5倍,扩增效率也较高)或FINNZYMESPhusion(保真度是普通Taq50倍,pfu6倍),以保证16S测序结果可信。

PCR体系:

模板 1μL

引物F 0.5μL

引物R 0.5μL

dNTP10 mM 0.5μL

LA Taq5U/μL 0.5μL

10×PCR buffer 2.5μL

灭菌水 19.5μL

总体积 25μL

模板 1μL

引物F 0.5μL

引物R 0.5μL

Phusion 12.5μL

灭菌水 10.5μL

总体积 25μL

注意:1PCR加样过程要在超净台进行。操作前先开紫外灯30 min,关闭后再开风机10 min,再用酒精棉球清洁台面和双手,方可开始操作。

2、一定要做阴性对照(不加模板,其余成分都加)!

3、所用PCR管、枪头、水均须严格灭菌。

4、加样过程中,每一管管盖开的时间不要太久,加完立刻扣上盖子,再加下一管,避免交叉污染(genomic DNA浓度通常很高,在空气中容易逸散)。

5、加样在冰盒上操作,加完轻轻吹吸,短暂离心,保证各组分均匀混合。

PCR程序:

针对全长:

94 4 min

94 30 s

65 40 s

72 90 s

72 10 min

4

针对V6区:

94 4 min

94 30 s

55 30 s

72 10 s

72 5 min

4

注意Phusion的扩增效率较LA Taq低,所以如果Phusion扩不出,可适当增加3-5个循环数。

电泳检测:

配制1%16S全长)或3%V6区)琼脂糖凝胶——样品PCR产物和阴性对照PCR产物各取4μL混合0.5μL 6×loading buffer点样,并点DL2000 Marker16S全长)或50 bp ladder MarkerV6区)——1×TAE115V,电泳45-60min——EB染色15 min——紫外凝胶成像仪拍摄电泳照片

正确的结果应该是:1.5kb单一亮带(16S全长)或稍小于100bpV6区)单一亮带,阴性对照无条带。

本文来源:https://www.2haoxitong.net/k/doc/9661dff4ba0d4a7302763a94.html

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