实验一 底物浓度对酶促反应的影响
1、实验目的
掌握底物浓度对酶活性的影响,了解碱性磷酸酶(Alkaline Phosphatase, AKP)的Km值的测定原理和方法,理解Km值的意义。
二、实验原理
在温度、pH及酶浓度等恒定的条件下,底物浓度对酶的催化作用有很大的影响。当底物浓度较低时,酶促反应速度V随底物浓度[S]的增高而显著加快,随着底物浓度渐高,反应速度加快程度渐小,当底物浓度增加到一定程度以上时,再增高底物浓度,反应速度亦不再增加,成为该条件下极限最大反应速度Vmax。底物浓度与反应速度的这种关系可以用下列米-曼(Michaclis-Menten)氏方程式表示。
V=8bfb48d9332827ab14374b186d9118fb.png
式中,Km为米氏常数。当V=Vmax/2时,则Km=[S],即米氏常数是反应速度等于最大速度一半时底物物浓度的数值。如图所示:
word/media/image4.gif [V]
Vmax
f4f54805d18f80bc75da836e66dcbce6.png
Km [S]
图1 底物浓度与酶促反应速度的关系
Km是酶的特征性常数,不同酶的Km值不同,同一酶作用于不同底物的Km值亦不同。大多数纯酶的Km值在0.01~100mmol/L之间。Km值的测定在酶学研究中有重要的实际意义。
根据实验结果绘制上述直角双曲线,难以准确求出Km和Vmax值。而用米曼氏方程式的下列变换式,则容易求得Km及Vmax值。
米曼氏方程式中各项皆采用倒数表示,则成为Lineweaver—Burk氏方程式:
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如图所示:
word/media/image10.gif a19577d226c2438f01e9188c0d96fd00.png
斜率=301651d56051784b5279a5e3864445b2.png
word/media/image13.gif
图2 Lineweaver—Burk氏法作图求Km值
这是个上截式直线方程式。a19577d226c2438f01e9188c0d96fd00.png
另有其他变换式,例如把上式两侧皆乘以[S],则转换成Wilkinson氏方程式。
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word/media/image21.gif如图所示:
e126fed1cd1e631db2262cad23da5171.png
斜率=16d59da0b096cd35e9bb148ab990ddd6.png
301651d56051784b5279a5e3864445b2.png
-K m [S]
图3 Wilkinson氏法作图求Km值
这也是直线方程式。以e126fed1cd1e631db2262cad23da5171.png
本实验利用磷酸苯二钠法测定不同浓度底物的碱性磷酸酶(Alkaline Phosphatase, AKP)的反应速度,作图求出Km值。
AKP的催化原理为:在一定pH和温度下,待测液中的AKP作用于基质液中的磷酸苯二钠,使之水解释放出酚。酚在碱性溶液中与4-氨基安替比林(AAP)作用并经铁氰化钾氧化,生成红色醌类化合物。以酚作标准液同样处理显色进行比色,可测知酚的生成量,从而计算出酶的活力。
三、实验器材
试管、37℃水浴锅、可见分光光度计、座标纸。
四、实验试剂
1、0.04mol/L基质液
称取磷酸苯二钠 2H2O 10.16g,用煮沸冷却的蒸馏水溶解并稀释至1000mL。加4mL氯仿防腐贮于棕色瓶中冰箱保存,可用一周。
2、0.1mol/L pH10碳酸盐缓冲液(含0.3% 4-氨基安替比林)
称取4-氨基安替比林(AAP)3g,用0.1mol/L pH10碳酸盐缓冲液溶解并稀释至1000mL,放棕色瓶内,冰箱保存。
3、酚标准液(1mg/mL)与酚标准应用液(0.1mg/mL)
word/media/image26.gif酚标准液(1mg/mL):称取结晶酚1.0克溶于0.1N盐酸至1000mL。
②酚标准应用液(0.1mg/mL):准确吸取酚标准贮存液(1mg/1mL)10.0 mL于100mL容量瓶中,加蒸馏水稀释至刻度,贮存冰箱中可保存一个月。
4、0.5%铁氰化钾溶液
称取5g铁氰化钾和15g硼酸,分别溶于400mL蒸馏水中,溶解后两液混合,再加蒸馏水至1000mL,置于棕色瓶中暗处保存。
5、0.1mol/L pH10碳酸盐缓冲液(37℃时)
称取无水碳酸钠6.36g及碳酸氢钠3.36g溶解于蒸馏水中,稀释至1000mL。
6、0.01mol/L pH8.8 Tris缓冲液
称取三羟甲基氨基甲烷(Tris)12.1g,用蒸馏水溶解并稀释到1000mL,此即为0.1mol/L Tris溶液。取上液100mL,加蒸馏水约700mL,再加0.1mol/L醋酸钠100mL,混匀后用1%醋酸调pH到8.8,用蒸馏水稀释至1000mL。
7、酶液
AKP(10mg,10U/mg)用0.01mol/L Tris缓冲液稀释成每mL含0.7—1.0单位的酶溶液。
五、实验操作
取干净试管8支,编号,按下表操作。特别注意准确吸取酶液、基质液及标准液。
摇匀37℃,保温5min
充分摇匀,37℃准确保温15min
以B管调零,读记在510nm处的各管光密度值OD,并填入下表,计算有关数据并作图。如按林贝氏法可如下进行:
列表并计算记入各有关数据。
底物浓度对酶促反应的影响
(1) 计算出各管的酶活性单位ODt/ODs×0.01,此数代表反应速度(V)。
(2) 计算出各管底物浓度:基质液浓度×2881226a57917cf757598b828691b7dc.png
(3) 进一步计算出各管的1/V及1/[S]值。
作图:以1/[S]为横坐标,以1/V为纵坐标,在方格坐标纸上准确画出各管坐标点,连接各点画出直线,向下延长线与横轴交点为-1/Km值。计算出Km值。
六、思考题
联系实验结果,讨论底物浓度对酶促反应的影响。
本文来源:https://www.2haoxitong.net/k/doc/89e18147cd84b9d528ea81c758f5f61fb6362854.html
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