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龙源期刊网 http://www.qikan.com.cn 黑叶观音莲组培快繁技术体系研究作者：秦鹏 罗燕羽 黄绍力 刘伟光 来源：《安徽农业科学》2020年第02期
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摘要;[目的]建立黑叶观音莲组培快繁技术体系。[方法]以黑叶观音莲的顶芽作为外植体，通过对外植体的消毒时间、不定芽诱导、增殖继代和生根培养等环节技术探究，建立黑叶观音莲组培快繁技术体系。[结果]最佳的外植体消毒时间为19min，污染率为5.6%，褐变率为4.4%;培养基MS+6-BA 5.00 mg/L+ NAA 0.20 mg/L最适合不定芽的诱导，诱导率62.2%;最佳的丛生芽增殖培养基为MS+6-BA 3.50 mg/L+ NAA 0.30 mg/L，增殖倍数为4.3;最佳的生根培养基为1/2MS+NAA 0.20 mg/L+0.50 g/L活性炭，生根率达100%。[结论]该研究建立了黑叶观音莲组培快繁技术体系，为其工厂化生产提供了理论依据。 关键词;观音莲;组培;诱导;增殖：生根
龙源期刊网 http://www.qikan.com.cn 中图分类号;S682.36文献标识码;A 文章编号;0517-6611（2020）02-0117-02 doi：10.3969/j.issn.0517-6611.2020.02.031 开放科学（资源服务）标识码（OSID）：
Study on Tissue Culture and Rapid Propagation of Acanthopanax amazonica QIN Peng，LUO Yan-yu，HUANG Shao-li et al;（Guangzhou Institute of Agricultural Sciences，Guangzhou，Guangdong 510890）
Abstract;[Objective]To establish the tissue culture regeneration system of Acanthopanax amazonica.[Method]With the top bud of the A.amazonica as the explant，the tissue culture regeneration system was established by the disinfection time，adventitious bud induction，proliferation and rooting culture.[Result]The best explant disinfection time was 19min，the contamination rate was 5.6%，and the browning rate was 4.4%.MS+6-BA 5.00 mg/L+NAA 0.20 mg/L was suitable for adventitious buds in the medium of A.amazonica，the induction rate was 62.2%;MS+6-BA 3.50 mg/L+NAA 0.20 mg/L was suitable for bud proliferation，the proliferation coefficient was 4.3;1/2MS+NAA 0.20 mg/L+0.50 g/L AC was suitable for rooting，the rooting rate reached 100%.[Conclusion]This study established a tissue culture regeneration system of A.amazonica，which provided a theoretical basis for its factory production. Key words;Acanthopanax amazonica;Tissue culture;Induction;Profileration;Rooting 黑叶观音莲（Alocasia amazonica）是天南星科海芋属多年生草本植物，又名美叶芋、黑叶芋[1-2]。近几年随着人们生活水平的提高和对室内环境的重视，黑叶观音莲作为一种室内观叶植物，因其别致的叶型、奇特的叶姿，又具有净化空气的功能，广受消费者欢迎[3-4]。传统黑叶观音莲的繁殖方式是以分株繁殖为主，其繁殖系数低，繁殖速度慢，且生长整齐度低，既无法满足消费者的需求，也不利于黑葉观音莲的工厂化发展。该研究以黑叶观音莲茎尖为外植体，探究了不同消毒时间对外植体污染率和褐变率的影响，以及不同植物生长调节剂对丛生芽诱导、增殖和生根的影响，建立了完整的黑叶观音莲组培快繁技术体系，解决其快速繁殖问题的同时，还能在短时间内提供大量的优质种苗，不仅能满足消费者的需求，还能实现其工厂化生产和快速发展。 1;材料与方法
1.1;材料;供试材料取自广州市农业科学研究院花都基地。
龙源期刊网 http://www.qikan.com.cn 1.2;方法
1.2.1;外植体的选取与消毒。
在外植体采集前7 d，对所选取的植株采用50%多菌灵800倍液进行浇灌。去除叶片、根部，留叶柄长度1～2 cm。在超净工作台中，使用75%乙醇消毒30 s，无菌水清洗2～3次，再分别用0.1% HgCl2溶液消毒，时间设置为15、17、19、21 min，共4个处理，设为A1～A4，然后用无菌水清洗5次，在消毒和清洗过程中持续摇晃。消毒完成后去除外植体苞叶，留下大小为0.5 cm×0.5 cm的茎尖，然后接入不定芽诱导培养基中。5 d后观察统计污染率和褐变情况，污染率=污染数/接种数×100%;褐变率=褐变数/接种数×100%。 1.2.2;不定芽的诱导。
将经过上述消毒处理的茎尖分别接入如下培养基中，B1：6-BA 3.00 mg/L+ NAA 0.05 mg/L; B2：6-BA 4.00 mg/L+ NAA 0.10 mg/L;B3：6-BA 5.00 mg/L+ NAA 0.20 mg/L;B4：6-BA 6.00 mg/L+ NAA 0.30 mg/L;B5：6-BA 7.00 mg/L+ NAA 0.40 mg/L，共5个处理，每处理接种45瓶，每瓶接入2个茎尖，重复3次。30 d后观察生长情况，统计丛生芽诱导率，不定芽诱导率=诱导数/接种数×100%。 1.2.3;丛生芽的增殖。
将成功诱导的丛生芽，分别接入如下增殖培养基中，C1：6-BA 2.00 mg/L+NAA 0.15 mg/L;C2：6-BA 2.50 mg/L+NAA 0.20 mg/L;C3：6-BA 3.00 mg/L+NAA 0.25 mg/L;C4：6-BA 3.50 mg/L+NAA 0.30 mg/L;C5 