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发布时间:2024-04-19 23:31:27   来源:文档文库   
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1.引物是如何合成的?目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种,主要都是由ABI/PE司生产,无论采用什么机器合成,合成的原理都相同,主要差别在于合成产率的高低,试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。申能博彩公司采用的合成仪主要机型为ABI3900高通量合成仪,合成长链主要采用Beckman1000MPE8909DNA合成仪,引物修饰和高OD数合成采用ABI394等。亚磷酰胺三酯法合成DNA片段,具有高效、快速的偶联以及起始反应物比较稳定的特点。亚磷酰胺三酯法是将DNA固定在固相载体上完成DNA链的合成的,合成的方向是由待合成引物的3′端向5′端合成的,相邻的核苷酸通过3′→5′磷酸二酯键连接。第一步是将预先连接在固相载体CPG上的活性基团被保护的核苷酸与三氯乙酸反应,脱去5′-羟基的保护基团DMT,获得游离的5′-羟基;第二步,合成DNA的原料,亚磷酰胺保护核苷酸单体,与活化剂四氮唑混合,得到核苷亚磷酸活化中间体,它的3′端被活化,5′-羟基仍然被DMT保护,与溶液中游离的5′-羟基发生缩合反应。第三步,带帽(capping反应,缩合反应中可能有极少数5′-羟基没有参加反应(少于2%,用乙酸酐和1-甲基咪唑终止其后继续发生反应,这种短片段可以在纯化时分离掉。第四步,在氧化剂碘的作用下,亚磷酰形式转变为更稳定的磷酸三酯。经过以上四个步骤,一个脱氧核苷酸被连接到固相载体的核苷酸上。再以三氯乙酸脱去它的5′-羟基上的保护基团DMT,重复以上步骤,直到所有要求合成的碱基被接上去。合成过程中可以观察TCA处理阶段的颜色判定合成效率。通过氨水高温处理,连接在CPG上的引物被切下来,通过OPC,PAGE等手段纯化引物,成品引物用C18浓缩,脱盐,沉淀。沉淀后的引物用水悬浮,测定OD260定量,根据定单要求分装。2.引物纯化方式有哪些,如何选择?C18柱脱盐:有人称其为简易反相柱,它对DNA有特异性的吸附,可以被有机溶解洗脱,但不会被水洗脱,所以能有效地去除盐分。它不能有效去除比目的片段短的小片段。实际上,它是一种脱盐的作用。这种方法一般不会对普通PCR反应产生影响。对于需要用于测序、克隆的引物不能使用这个级别。OPC纯化:OPC纯化是根据DNA保护基(DMTr基)和Cartridge柱中树脂间的亲合力作用的原理进行纯化目的DNA片段。OPC法纯化的DNA纯度大于95%。适用于40mer以下引物的纯化。PAGE纯:PAGE纯化法是使用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,对DNA片段进行分离,然后从凝胶中回收目的DNA的方法。PAGE纯化法也是一种非常有效的DNA纯化方法,纯化后的DNA纯度大于95%,对长链OligoDNA(大于50mer的纯化特别有效。HPLC纯化:HPLC纯化是使用高效液相色谱的原理,对DNA片段进行纯化。纯度可以大于99%主要用于短链和修饰引物的纯化。该法的弱点是成本较高,批量生产效率不高。3.引物的OD数如何定量?答:引物合成引物OD数是这样测定的:用紫外分光光度计,波长260nm,石英比色杯,光程为1厘米,测定溶液的光密度。测定时溶液的光密度最好稀释到0.2-1.0之间。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后,用1ml水稀释测OD值。需要根据稀释倍数换算出母液的OD值。4.投诉定量不准是怎么回事儿?答:我们偶尔收到用户投诉定量不准的报告,出现这种情况的可能性有1)生产人员定量错误。这种可能性有,但是不大,因为我们的生产人员都是经过严格的培训,程序化规范操作和换算。公司内部的考核机制也使得分装人员没有必要故意少给用户
OD数,因为无论OD数是否达到定单要求,我们都统计为工作量,没有达到OD数的,分装人员将清单及时报到序列录入部门安排重合就可以了。合成产量的高低是序列录入部门人员的考核指标之一。一般情况下,引物都有留样。接到用户投诉后,我们都会找出留样重新定量,一般都没有问题。2)分装没有问题,但引物抽干或收样过程中,引物干粉可能意外丢失。这种情况很少见。3)系统误差,我们认为10%左右为允许误差。使用过程中,引物工作浓度范围很宽,定量上的少许偏差不影响实验。4)用户没有能够正确理解引物OD数的含义,没有能够正确使用分光光度计,特别是使用微量测定;用户没有将OD读数,正确地转换成母液中OD数。这种情况比较常见。5)用户收到引物干粉时,打开引物管盖前没有离心或其他误操作导致引物干粉部分丢失。例如,验证标2OD引物量是否准确,简单的做法是:加入1ml水,彻底溶解混匀后,100ul,加入900ul水,用光径为1cm的石英比色杯,波长260nm,此时光吸收的读数为0.25.需要什么级别的引物?答:引物常用的纯化方式C18脱盐,OPC纯化,PAGE纯化,HPLC纯化。根据实验需要,确定订购引物的纯度级别。应用一般PCR扩增诊断PCR扩增DNA测序亚克隆,点突变等基因构建(全基因合成)反义核酸修饰引物引物长度要求<45base>45base<40base20base左右根据实验要求定根据实验要求定根据实验要求定根据实验要求定OPCPAGEOPC,PAGEOPCOPC,PAGEHPLCPAGEPAGEPAGE,HPLC纯度级别要求6.最长可以合成多长的引物?答:引物越长,出现问题的概率就越大。我们合成过120base的引物,但是产率很低。除非需要,建议合成片段长度不要超过80mer,按照目前的引物合成效率,80mer的粗产品,全长(还不一定正确)引物的百分比不会超过40%后续处理还有丢失很多,最后的产量是很低。7.需要合成多少OD数?答:根据实验目的确定。一般PCR扩增,2OD引物,可以做200-50050ul标准PCR反应。如果是做基因拼接或退火后做连接,1OD就足够了。但是有些研究人员,就做几次PCR但是却要5-10OD做全基因构建的引物都比较长,但是我们有些研究人员也要求高OD数。片段越长,最后全长得率就越低,出错的几率就越大。超出需要之外的OD数要求,其实也是对社会资源的一种浪费,同时也从一个侧面反映了部分研究人员,特别是新手的自信心不足,总觉得需要重复多次才能成功。8.如何检测引物的纯度?答:实验室方便的作法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳。取0.2-0.5OD的引物,用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和,上样前加热变性(95,2mins。加入尿素的目的一是变性,二是增加样品比重,容易加样。600V压进行电泳,一定时间后(2-3小时,剥胶,用荧光TLC板在紫外灯下检测带型,在主带之下没有杂带,说明纯度是好的。如果条件许可,也可以用EB染色或银染方式染色。9.如何计算引物的浓度?答:引物保存在高浓度的状况下比较稳定。引物一般配制成10-50pmol/ul溶解前您需要核对合成报告单和引物标签上的引物OD数是否一致。如果不一致,请和我们联系。我们可以根据生产记录查到实际产量是多少。

本文来源:https://www.2haoxitong.net/k/doc/02623254f142336c1eb91a37f111f18583d00c20.html

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